Вестник реабилитации органов и тканей № 3, 2006 год |
Материал и методы исследования |
МАТЕРИАЛ
Настоящий материал представляет вниманию коллег первые результаты плановых клинических исследований (504 процедуры на 98 пациентах), выполненных сотрудниками кафедры органотерапии (экстракорпоральных методов лечения) ФПК-МР РУДН на базе отделения гемодиализа (руководитель – канд. мед. наук – А.В. Звездин) Клинической психиатрической больницы № 24 в г. Видное Московской области (руководитель - заслуженный врач Российской Федерации А.И. Красильников) и отделения травматологии и ортопедии (руководитель – С.М. Гришин) Больницы РАН в г. Троицк Московской области (руководитель - заслуженный врач Российской Федерации, канд. мед наук В.И. Денисенко). С целью установления наиболее перспективных направлений использования органосберегающих технологий работу вели в достаточно широком нозологическом спектре заболеваний. Перечень нозологических форм таких заболеваний, представлен в таблице № 1.
Таблица № 1.
Нозологические формы заболеваний, представленные для демонстрации полученных результатов.
МКБ-10 |
№ пп. |
Наименование |
Кол-во пациентов |
Кол-во процедур |
|
1 |
Аутоиммунный тиреоидит |
3 |
9 |
|
2 |
Системный аутоиммунный процесс с поражением лёгких, печени, суставов, отягощённый гепатитом С |
1 |
2 |
|
3 |
Гепатит С |
20 |
338 |
|
4 |
Бронхиальная астма |
7 |
24 |
|
5 |
Болезнь Паркинсона |
1 |
1 |
|
6 |
Мочекаменная болезнь |
1 |
2 |
|
7 |
Кардиосклероз, склероз коронарных артерий |
1 |
3 |
F 48.8 |
8 |
Психастенический невроз психогенного генеза |
5 |
6 |
|
9 |
Параноидная шизофрения |
3 |
9 |
|
10 |
Андрогенная недостаточность |
8 |
11 |
|
11 |
Подагра |
7 |
14 |
|
12 |
Псориаз |
11 |
17 |
|
13 |
Нейродермит |
2 |
8 |
|
14 |
Аспергиллёз |
1 |
2 |
|
15 |
Хронический деформирующий артроз |
26 |
53 |
|
16 |
Инфицированная раневая поверхность |
3 |
8 |
Итого: |
|
|
100 |
230 |
Общая характеристика методов лечения. Из числа хорошо зарекомендовавших себя способов органотерапии [28, 29, 92] [5] в настоящем материале представлены данные, полученные при выполнении поименованных в таблице № 2 процедур.
Забор донорского материала, его первичную обработку, консервацию и транспортировку осуществляли по общепринятой методике [11, 12, 35, 74, 92], утверждённой Главным Управлением лечебно-профилактической помощи Министерства здравоохранения СССР [68]. Забор биоматериала выполняли на базе специализированного питомника мясокомбината ЗАО «Белая дача - Романцево» Московской области (ветеринарный врач – В.Н. Полякова) в полном соответствии требованиям ветеринарного, санитарно-гигиенического и санитарно- эпидемиологического контроля. В качестве доноров использовали молодых здоровых животных (свиней) возрастом не старше 8-12 месяцев.
Таблица № 2.
Перечень процедур, включённых в общий курс лечения пациентов, представленных для демонстрации полученных результатов
№ пп. |
Наименование |
Кол-во пациентов |
Кол-во процедур |
1 |
Изолированная экстракорпоральная перфузия ксеногенного биоматериала с последующим внутривенным введением перфузата |
29 |
34 |
2 |
Экстракорпоральная кровяная перфузия ксеногенного биоматериала |
3 |
7 |
3 |
Аппликация срезов ксеногенных органов на раневые и иные повреждённые поверхности тела |
15 |
19 |
4 |
Внутрисуставное введение препарата «Дипроспан» |
12 |
36 |
5 |
Внутрисуставное введение органопрепарата – коллагенсодержащего матрикса Сферо®ГЕЛЬ |
14 |
16 |
6 |
Внутривенное введение препарата «Лактоферрин» |
20 |
280 |
7 |
Гемофильтрация |
37 |
108 |
9 |
Дискретный плазмоферез |
1 |
4 |
Итого: |
|
130 |
504 |
В качестве консервирующего раствора применяли стандартный кристаллоидный ионно-сбалансированный кардиоплегический раствор [16], охлаждённый до +0+5ºС. Общее время тепловой ишемии составляло 12-14 минут (13,0±0,71 мин); общее время консервации 3,37±1,05 часа (223,1±63,09 мин) при температуре +5+10ºС.
Последующие манипуляции осуществляли в стерильном боксе. Непосредственно перед исполнением процедуры донорский биоматериал измельчали глазными ножницами на фрагменты ~3х4 мм (общее количество ~20,0 г) и помещали (рисунок 5) в рабочую камеру стандартного артериального фильтра (диаметр пор 20 мкм), входящего в состав сета одноразовой стерильной системы, изготовленной по специальному заказу фирмой Dideco S.p.A. (Италия).
Рисунок 5
Загрузка донорского материала
в рабочую камеру артериального
фильтра
Изолированная экстракорпоральная перфузия донорского материала (рисунок 6) является обязательным этапом для всех экстракорпоральных способов органотерапии, за исключением аппликационных и имплантационных.
Рисунок 6
Артериальный фильтр
в режиме изолированной
экстракорпоральной перфузии
В рамках настоящей работы перфузию донорского материала осуществляли с помощью роликового насоса окклюзионного типа фирмы Stöckert Instrument (ФРГ). В качестве перфузионной среды использовали оксигенированный физиологический раствор натрия хлорида (рО2 = 300-350 mm Hg; объём заполнения = 350 мл). Параметры перфузии: V = 80-100 мл/мин; t = 45 минут; T° = +18+20ºС.
Через 45 минут полученный перфузат сливали, заполняя стерильные флаконы для внутривенного введения extemplō или подключали аппарат к венам пациента.
Экстракорпоральная кровяная перфузия донорского материала была выполнена путём подключения работающего перфузионного устройства в режиме изолированной экстракорпоральной перфузии, к сосудам пациента. Для этого пунктировали обе локтевые вены (рисунок 7), соединяя артериальную магистраль с одним из катетеров. Венозную магистраль, обеспечивающую возврат крови пациенту, соединяли с катетером, введённым в другую локтевую вену. Пациента гепаринизировали (2,0 мл). Через 20 минут перфузии в артериальную магистраль установки добавляли ещё 2,0 мл гепарина.
Рисунок 7.
Подключение перфузионного
устройства к сосудам реципиента
Оксигенацию крови, поступающей в рабочую камеру артериального фильтра, осуществляли путём смешения венозного потока с физиологическим раствором, насыщенным кислородом (режим насыщения - барботаж; рО2 = 400-450 mm Hg; V = 5,6±0,6 мл/мин). Параметры перфузии: V = 100-120 мл/мин; t = 45 минут; T° = +28+30ºС. Через 45 минут перфузию прекращали. Кровь возвращали пациенту.
Аппликации срезов ксеногенных органов на раневые и иные повреждённые поверхности тела осуществляли следующим образом:
1. раневую или иную повреждённую поверхность подвергали тщательной хирургической обработке;
2. на подготовленную к аппликации раневую или иную повреждённую поверхность накладывали соразмерный с ней лоскут донорского органа, ориентируя его свежим срезом к раневой поверхности;
3. лоскут фиксировали марлевой повязкой.
Общее время экспозиции: 4-5 часов. Процедуру повторяли ежедневно в течение 5-7 дней, при необходимости сочетая с другими способами органотерапии (инъекции, инфузии, перфузии) и/или традиционными мазевыми повязками.
В отдельных случаях проведение повторных аппликаций не требовалось.
В качестве аппликанта использовали свиную селезёнку и/или печень кролика. Процесс приготовления срезов с донорского органа представлен на рисунке 8.
Рисунок 8.
Свежий срез ксеногенной селезёнки
Гемофильтрацию проводили на аппарате «искусственная почка» фирмы FRESENIUS 2008 А (ФРГ) с использованием полисульфонных фильтров HF-60-S. Метод гемофильтрации встречно-поточный.
Дискретный плазмоферез осуществляли с использованием донорской центрифуги отечественного производства при 2800 оборотах в минуту с 10-ти минутной экспозицией отстоя. Больному перед забором крови проводили превентивную гепаринизацию и добавочное разведение плазмы в кровеносном русле 1,5 литрами раствора Рингера с последующим возвратом эритроцитарной массы. Плазмозамещение осуществляли раствором Рингера и дезоксикрахмалом под контролем артериального давления. В качестве поддерживающей терапии использовали преднизолон в растворе 30 мг на каждую заборную дозу (250-300 мл плазмы).
Внутривенное введение органопрепаратов. В качестве органопрепаратов использовали свежеприготовленный перфузат, полученный после 45-минут изолированной экстракорпоральной перфузии ксеногенного биоматериала оксигенированным физиологическим раствором (pO2 = 350-400 мм.рт.ст.) в объеме 250,0 мл внутривенно. Раствор вводили капельным путём.
В качестве нативного биологически активного белка использовали органопрепарат Лактоферрин, полученный из донорского молока человека методом HLPLC на ионно-обменных колонках в Лаборатории трансгенных препаратов (руководитель – кандидат биологических наук В.С. Косоруков) Научно-исследовательского института экспериментальной диагностики и терапии опухолей (директор – академик РАЕН, профессор А.Ю. Барышников) Онкологического научного центра РАМН.
Внутрисуставные инъекции органопрепаратов. В качестве органопрепарата при лечении хронического деформирующего остеоартроза использовали гетерогенный коллагенсодержащий препарат Сферо®ГЕЛЬ [45], разработанный в Центре биополимеров (руководитель – профессор В.И. Севастьянов) НИИ трансплантологии и искусственных органов Россоцздрава (директор – академик РАН и РАМН, профессор В.И. Шумаков). Препарат вводили в верхний заворот коленного сустава пациента через инъекционную иглу 1,2 × 40 мм.
МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
Клинические, иммунологические, биохимические, вирусологические и другие лабораторные исследования были выполнены на базе медицинских диагностических лабораторий «ИНВИТРО».
Результаты лечения хронического деформирующего остеоартроза оценивали по объёму четырёхглавой мышцы бедра, пассивному и активному сгибанию-разгибанию коленного сустава, субъективным ощущениям пациента.
Качество жизни оценивали по объективным показателям и субъективным ощущениям пациентов в период всего наблюдения.